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dc.creatorRother, Paula Daniela Helfenstein-
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/3170555322207891por
dc.contributor.advisor1Marina Kimiko, Kadowaki-
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/1819723253019762por
dc.contributor.referee1Maller, Alexandre-
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/8153318875076127por
dc.contributor.referee2Friedrich, Juliana Cristhina-
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/9252021261053905por
dc.date.accessioned2023-02-10T14:31:19Z-
dc.date.issued2022-11-25-
dc.identifier.citationRother, Paula Daniela Helfenstein. QUITINASE DE Thermothelomyces heterothallicus PA2S4T: PURIFICAÇÃO, CARACTERIZAÇÃO BIOQUÍMICA E APLICAÇÃO BIOTECNOLÓGICA. 2022. 75 f. Dissertação( Mestrado em Ciências Farmacêuticas) - Universidade Estadual do Oeste do Paraná, 2022.por
dc.identifier.urihttps://tede.unioeste.br/handle/tede/6437-
dc.description.resumoAs quitinases são enzimas responsáveis por degradarem a quitina, um polímero insolúvel presente no exoesqueleto de insetos, em fungos, leveduras, algas e crustáceos. São inúmeros os organismos que produzem essas enzimas, sendo os fungos as principais fontes de obtenção. Elas são utilizadas em diversas áreas pela indústria, como na composição de defensivos agrícolas, em produtos farmacêuticos, como conservante e como adjuvante na terapia com medicamentos antifúngicos. Além disso, os quitooligossacarídeos (QOS), produtos gerados após a hidrólise da quitina, possuem diferentes atividades biológicas, como antimicrobiana e prebiótica. Assim, este estudo teve por objetivo purificar e caracterizar bioquimicamente a quitinase extracelular do fungo Thermothelomyces heterothallicus PA2S4T, bem como avaliar sua aplicação em diferentes metodologias biotecnológicas. A quitinase extracelular purificada parcialmente apresentou massa molecular de 120 kDa e, após análise do zimograma e características bioquímicas, constatou-se uma β-N acetilglicosaminidase (GlcNAcase). A GlcNAcase apresentou maior atividade em temperatura de 65 ºC e pH 6,0, sendo estável em temperaturas entre 40 e 55 ºC e na faixa de pH 6,0 a 6,5. Os álcoois etílico, isobutílico, isopropílico e o glicerol aumentaram a atividade enzimática, enquanto o HgCl2 e FeCl2 a 5 mmol/L inibiram totalmente. A GlcNAcase apresentou atividade catalítica elevada com os substratos p-nitrofenil N-acetil-β-D-glicosaminídeo e p-nitrofenil β-D-glicopiranosídeo e nenhuma atividade na presença de quitina coloidal. Os valores de Vmáx, Km, kcat, kcat/Km e Ea foram 971,81 µmol/mL/min, 0,14 mg/mL, 1962,4 s-1 , 4867,06 mM/s e 43,92 kJ/mol, respectivamente. A análise das imagens obtidas por microscopia eletrônica de varredura (MEV) indicaram que a bioconversão da casca de camarão in natura foi efetiva e não é necessário o emprego de pré-tratamento para que a degradação seja exitosa. Após análise dos produtos obtidos, verificou-se a produção de N acetilglicosamina (GlcNAc) e de QOS com maiores graus de polimerização (GP), possivelmente diacetilquitobiose e quitotriose, indicando que o extrato bruto de T. heterothallicus PA2S4T pode conter dois tipos de quitinases: uma endoquitinase ou quitobiase e uma GlcNAcase. Além disso, os QOS obtidos apresentaram um efeito prebiótico sobre o crescimento de Lactobacillus paracasei superior ao da glicose. As características apresentadas pelas quitinases deste estudo e pelos produtos da sua hidrólise evidenciam o grande potencial para a utilização destes pela indústria biotecnológica.por
dc.description.abstractChitinases are enzymes responsible for degrading chitin, an insoluble polymer present in the exoskeleton of insects, fungi, yeasts, algae, and crustaceans. There are countless organisms that produce these enzymes, and fungi are the main sources of obtaining them. They are used in several areas by the industry such as in the composition of agricultural pesticides, in pharmaceutical products as a preservative and as an adjuvant in therapy with antifungal drugs. In addition, chitooligosaccharides (COS), products generated after the hydrolysis of chitin, have different biological activities, such as antimicrobial and prebiotic. Thus, this study aimed to purify and biochemically characterize the extracellular chitinase of the fungus Thermothelomyces heterothallicus PA2S4T, as well as to evaluate its application in different biotechnological methodologies. The partially purified extracellular chitinase exhibited a molecular mass of 120 kDa and, after analysis of the zymogram and biochemical characteristics, it was found to have a β-N-acetylglucosaminidase (GlcNAcase). GlcNAcase exhibited higher activity at 65 ºC and pH 6.0, remaining stable at temperatures between 40 and 55 ºC and in the range of pH 6.0 to 6.5. Ethyl, isobutyl, isopropyl alcohols, and glycerol increased enzymatic activity, while HgCl2 and FeCl2 at 5 mmol/L completely inhibited it. GlcNAcase showed high catalytic activity with the substrates p-nitrophenyl N-acetyl-β-D-glucosaminide and p-nitrophenyl β-D glucopyranoside and no activity in the presence of colloidal chitin. The values of Vmax, Km, kcat, kcat/Km, and Ea were 971.81 µmol/mL/min, 0.14 mg/mL, 1962.4 s-1 , 4867.06 mM/s, and 43.92 kJ/mol, respectively. The analysis of images obtained by scanning electron microscopy (SEM) indicated that the bioconversion of in natura shrimp shell was effective, and that no pre-treatment is necessary for the degradation to be successful. After analyzing the products obtained, the production of N acetylglucosamine (GlcNAc) and COS with higher degrees of polymerization (DP) was verified, possibly diacetylchitobiose and chitotriose, indicating that the crude extract of T. heterothallicus may contain two types of chitinases: an endochitinase or chitobiase and a GlcNAcase. Furthermore, the COS obtained showed a prebiotic effect on the growth of Lactobacillus paracasei superior to that of glucose. The characteristics presented by the chitinase in this study and by the products of their hydrolysis show the great potential for their use by the biotechnology industry.eng
dc.description.provenanceSubmitted by Edineia Teixeira (edineia.teixeira@unioeste.br) on 2023-02-10T14:31:19Z No. of bitstreams: 2 Paula _Rother.2022.pdf: 4765309 bytes, checksum: 86808431f65a38135b869e89b69d4f01 (MD5) license_rdf: 0 bytes, checksum: d41d8cd98f00b204e9800998ecf8427e (MD5)eng
dc.description.provenanceMade available in DSpace on 2023-02-10T14:31:19Z (GMT). No. of bitstreams: 2 Paula _Rother.2022.pdf: 4765309 bytes, checksum: 86808431f65a38135b869e89b69d4f01 (MD5) license_rdf: 0 bytes, checksum: d41d8cd98f00b204e9800998ecf8427e (MD5) Previous issue date: 2022-11-25eng
dc.description.sponsorshipCoordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - CAPESpor
dc.formatapplication/pdf*
dc.languageporpor
dc.publisherUniversidade Estadual do Oeste do Paranápor
dc.publisher.departmentCentro de Ciências Médicas e Farmacêuticaspor
dc.publisher.countryBrasilpor
dc.publisher.initialsUNIOESTEpor
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticaspor
dc.rightsAcesso Abertopor
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by/4.0/-
dc.subjectβ-N-acetilglicosaminidasepor
dc.subjectEndoquitinasepor
dc.subjectQuitinapor
dc.subjectEnzima fúngicapor
dc.subjectQuitooligossacarídeospor
dc.subjectPrebióticopor
dc.subjectβ-N-acetylglucosaminidaseeng
dc.subjectEndochitinaseeng
dc.subjectChitinpor
dc.subjectFungal enzymepor
dc.subjectChitooligosaccharidespor
dc.subjectPrebioticpor
dc.subject.cnpqCIENCIAS FARMACÊUTICASpor
dc.titleQUITINASE DE Thermothelomyces heterothallicus PA2S4T: PURIFICAÇÃO, CARACTERIZAÇÃO BIOQUÍMICA E APLICAÇÃO BIOTECNOLÓGICApor
dc.title.alternativeThermothelomyces heterothallicus PA2S4T CHITINASE: PURIFICATION, BIOCHEMICAL CHARACTERIZATION AND BIOTECHNOLOGICAL APPLICATIONeng
dc.typeDissertaçãopor
dc.publisher.campusCascavelpor
Appears in Collections:Mestrado em Ciências Farmacêuticas (CVL)

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